疫病防治

>疫病防治>新闻中心>首页
您现在的位置  |

猪瘟研究进展

信息来源:本站  浏览次数:622  发布时间:2016-02-02
摘要:猪瘟是由猪瘟病毒引起的一种急性、发热性、接触性 高度传染性疾病,可引起各种年龄猪发病。世界动物卫生组织将猪瘟列为A类15种法定传染病之一。近年来猪瘟的流行和发病出现了新的变化。如非典型性、持续性感染以及免疫失败等。当前,猪瘟仍是世界养猪业的一大威胁,造成了严重的经济损失。本文通过分析猪瘟的最新流行特点诊断技术以及疫苗应用,并总结猪瘟防控中的几项实用技术。为猪瘟的研究与防控提供一定的参考。

关键词:猪瘟;流行;防治

猪瘟又称经典猪瘟(Classical swine fever,CSF),是由猪瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)引起猪的高度致死性、接触性传染病,据Dune(1975)报道,该病于1833年首先发现于美国的俄亥俄州,但FuChs (1996)报道该病于1862年首先出现于英格兰,然后传到欧洲大陆[1-4]。自1983年爆发的百余年来,己经遍布全世界(除北美洲和大洋洲外),给养猪业带来了巨大的经济损失,是严重危害全球养猪业的重要传染病。

1流行特点:

1.1散发流行:近年CSF在我国没有大规模爆发流行,而呈散发流行趋势。主要是因为大规模地免疫接种,猪群均有一定程度的免疫保护率。当前CSF发病无季节性,主要取决于猪群的免疫状态与饲养管理水平,且流行规模较小,强度较轻。但是这种散发流行见于全国各地,加上我国巨大的饲养量,所以猪瘟造成的直接经济损失仍然十分严重。

1.2发病年龄小:发病多见于3月龄以下,特别是断奶前后和出生10日龄以内的仔猪。而成年猪(育肥猪、种猪班乏少发病。

1.3病性复杂:非典型猪瘟己是我国CSF的常见病型,目前在现地所见到的猪瘟在临床与病理解剖上不够典型,发病率与死亡率已显著降低,病程明显延长。死亡率高,病程短的猪瘟相对少一些。种猪的持续性感染和初生仔猪的先天感染可能比较普遍,这种类型的感染猪往往外表健康,所以是引起CSF流行最危险的传染源,应受到高度重视。

1.4免疫力低下:目前大部分猪群均注射过兔化弱毒疫苗,但免疫注射猪群的免疫力低下却普遍存在,由于没有进行抗体监测,这一情况通常被忽视,结果免疫猪时有发病。这就是所谓的“免疫失败”现象。造成这种现象出现的主要原因是:持续性感染和先天感染。这2种感染形式均可导致免疫耐受,这可能是免疫力低下最重要的原因[5]。

2猪瘟的实验室诊断

世界各国都很重视对CSFV的研究,在CSFV的鉴别诊断方面相继建立了以抗原-抗体反应为基础的酶联免疫吸附试验(ELISA)[6]、荧光抗体血清中和技术(FASN test)[7]等方法。国内检测CSF抗体的血清学方法主要有间接免疫荧光(IIFA)、间接ELIA、Dot-ELISA、PPA-ELISA和间接血凝试验(IHA),所用抗原为浓缩纯化的细胞培养CSFV抗原。国外用于CSF诊断和免疫监测的血清学方法有间接ELISA、阻断ELISA、中和过氧化物酶联试验(NPLA)、竞争酶联免疫吸附试验(C-ELISA)等,所用抗原多为杆状病毒表达的重组蛋白。目前常用的有血清中和试验、间接ELISA。

2.1血清学诊断技术

血清中和试验:通过血清中和试验可以检测出动物体内的抗体,但因 大量使用猪瘟兔化弱毒疫苗后 ,猪群 中的猪瘟抗体水平普通较高,所以应进行前后相关14d以上的双份血清检测,才能确定抗体滴度是否升高。免疫荧光中和试验比猪瘟兔化交叉试验检测猪瘟效果高。血清中和试验具有快速、方便,节省人力物力等优点,但不能精确检测猪瘟抗体水平滴度。

2.2间接ELISA

目前用夹心ELISA与FA进口单抗ELISA比较检测猪瘟抗原的结果表明,夹心ELISA与FA试验具较高的相关性,经对45份可疑样品的同步检测,二者阳性结果符合率为92.8%,仅3份样品结果 定性存在差异。 经与进口单抗ELISA同步检测,阳性结果符合率达97.7%。 同时也有报道,朱义霞用此法对13份样品进行了检测,其结果阳性3份,阳性率为27.3%。 她建立的夹心ELISA方法,经特异性检验和重复性试验,表明有较好的特异性,并经对不同来源病毒样品的检测,证实了其敏感性和实用性 。该法的优点:敏感性高,适用于群体监测。缺点:未标准化,如果确诊需运用兔体中和试验进行复核。

3综合防治措施

为了控制CSF,人们从包括CSFV分子生物学、抗原特异性、流行病学、发病机理及免疫机理等方面进行了广泛的研究,尤其是近年CSF流行形式发生变化,根据传统疫苗的免疫效果,人们投入了大量的人力和财力进行新型疫苗的研制,已取得了一定成绩。

3.1加强种猪群猪瘟病毒的净化

种猪的持续感染或带毒仔猪是发生猪瘟的最大威胁。持续感染的母猪注射猪瘟疫苗后抗体水平通常不明显上升,要坚决淘汰,不能再作为繁殖或配种之用,以达到净化种猪群的目的。具体做法是:一旦确认猪场存在猪瘟时,要立即实施净化,采集所有种猪扁桃体进行荧光抗体试验检查,只要检查出猪瘟抗原阳性的猪,一律立即淘汰。

3.2对猪群抗体进行监测

目前的各种疾病相互感染,使得抗体水平已经不能用过去的经验进行检测, 为了能更好地掌握猪群的抗体水平, 必须对猪群的抗体水平进行定期的检测,然后设定合理的免疫程序。

3.2提高免疫质量

3.2.1注重疫苗选择。目前用于预防猪瘟的疫苗主要有 :猪瘟活疫苗(Ⅰ),为组织苗,分为乳兔苗和脾淋苗;猪瘟活疫苗(Ⅱ),为细胞苗。此外,还有猪瘟—猪丹毒二联苗和猪瘟—猪丹毒—猪肺疫三联苗。经常使用猪二联或三联苗会造成猪瘟免疫效果差。最好使用单苗进行免疫,尤其是规模猪场最好选用脾淋苗[8]。

3.2.2科学掌握免疫剂量 。当前仅猪瘟疫苗可适当增加免疫剂量,一般加大剂量3~5倍。

3.2.3严格免疫操作规程。严格进行消毒,注意把握疫苗的稀释、注射部位,同时还应考虑到其他疫苗之间的相互干扰。

3.2.4制定合理的免疫程序。仔猪首免的时间是关键 ,许多仔猪30日龄以内注射疫苗后,由于母源抗体的干扰,并不能产生有效的免疫力。对仔猪监测抗体时,了解母源抗体的降低时间,以选定首免日龄以及合理的种猪免疫时间。仔猪死亡较多的猪场,可采用超前免疫,即零时免疫;一般情况可按25~34日龄及60~70日龄各免疫1次,母猪配种前免疫1次,尽量不要在怀孕期间用猪瘟疫苗免疫 。种公猪每年至少免疫2次[9]。

参考文献:

[1]王在时.猪瘟防制研究的回顾与展望.中国兽药监察所研究报告汇编.(国家攀登计划[1995-1999]专集),1999,14:1-28

[2]刘湘涛,赵启祖,李忠润,等.猪瘟病毒(HCV)的研究进展和存在的问题.兰州大学学报(自然科学版.遗传学专辑),1995,31:157-161

[3]殷震,刘景华主编.动物病毒学(第2版).北京:科学出版社,1997.652-664

[4]刘湘涛,赵启祖,李忠润等.猪瘟病毒和猪瘟防制[M].畜禽重大疫病免疫防制研究.北京中国农业出版社,1996,51-63

[5]余兴龙 涂长春 李红卫 陈创夫 李作生 马正海 孙明 殷震,2000,猪瘟病毒E2基因真核表达质粒的构建及基因疫苗的研究,中国病毒学,15(3):265-271

[6]Shannon A D,Morrissy C,Mackintosh S G,etal.Detection of antigens in experimentally infected pigs using antigen capture ELISA[J].Veterinary Microbiol,1993,34:233-248

[7]Bunavoglia C,Falcone E,Pestalozza S,etal.A rapid serum neutralization test inmicroplates for the detection of antibodies to hog cholera virus[J].J Virol Methods,1989,23:77-80.

[8]李斌.春季常见猪病及综合防控措施[J].现代农业科技 ,2009(7):216,218

[9]李忠国 ,刘茂胜.浅谈猪瘟的流行及防治措施[J].养殖技术顾问 ,2009(3):123



第一作者:徐新红(1967年—),女,高级兽医师。